[{"data":1,"prerenderedAt":-1},["ShallowReactive",2],{"$f24372f76rv0i":3},{"data":4,"error":11},{"id":5,"documentId":6,"heading":7,"body":8,"slug":9,"title":10,"title_ar":11,"species":12,"citations":14,"medical_conditions":28,"animal_species":35,"test_discipline":48,"test_method":54,"test_samples":60,"test_purposes":61,"test_settings":62},3834,"cal4af7e10o1t5om2tkn7w2u","تفاعل RT-PCR لجين F في طاعون المجترات الصغيرة","## ما الذي يكشفه الاختبار\n\nيكشف هذا الاختبار، شأنه شأن تفاعل البوليميراز المتسلسل بالنسخ العكسي (RT-PCR) لجين N، فيروس طاعون المجترات الصغيرة (PPRV) من السلالات الوراثية (lineages) الأربع جميعها، وهو مبني على المقايسة التي نشرها Forsyth وزملاؤه أصلاً (2003)، وتتكون مرحلته الأولى من تفاعل RT-PCR في أنبوب واحد بالبادئتين F1b وF2d المصمَّمتين على جين F.\n\n## المتطلبات\n\nيحتاج الاختبار إلى عدة RT-PCR أحادية الخطوة، وماء مقطر، والبادئات المناسبة، وجهاز تدوير حراري (thermal cycler)، وكواشف ومعدات للرحلان الكهربائي على هلام الآغاروز، وقد جرى التحقق من صلاحية البروتوكول الذي يورده دليل المنظمة العالمية لصحة الحيوان (WOAH) لهذا الاختبار باستخدام عدة تجارية، مع إمكان اعتماد كواشف أخرى بعد اختبارها والتحقق منها بالشكل المناسب. ويشترط الدليل في كل مقايسة أربعة عناصر على الأقل: العينة، وشاهد سلبي، وشاهد إيجابي، وشاهد خالٍ من القالب (no-template control) يحلّ فيه ماء خالٍ من إنزيم RNase محل عينة الحمض النووي الريبي.\n\n## تفسير النتيجة\n\nيُحلَّل 10 ميكرولترات من ناتج التفاعل على هلام آغاروز بتركيز 2% في محلول TBE أو TAE، فإذا كان الحمض النووي الريبي للفيروس موجوداً ضُخِّم إلى قطعة DNA طولها 447 زوجاً قاعدياً (bp)، وإن لم يظهر ناتج DNA أو ظهر ناتج ضعيف جداً أمكن إجراء جولة ثانية من PCR لزيادة كمية الناتج. وتُجرى هذه الجولة الثانية PCR متداخلاً (nested PCR) بالبادئتين F1 وF2 وبأي كواشف وإنزيم جيدة النوعية جرى التحقق من صلاحيتها، ويُحلَّل ناتجها على هلام آغاروز 2%، فإن وُجد ناتج PCR للفيروس ظهر في قطعة DNA طولها 371 زوجاً قاعدياً.\n\n## استخدامات إضافية\n\nيمكن تنقية ما يتبقى من ناتج DNA للعينات التي ثبتت إيجابيتها وإخضاعه لتحديد التسلسل (DNA sequencing).","peste-des-petits-ruminants-rt-pcr-f-gene","Peste des petits ruminants virus (small ruminant morbillivirus) RT-PCR for the diagnosis of PPRV based on the amplification of part of the F gene",null,[13],"sheep and goats (Caprinae)",[15,21],{"source":16,"licence":17,"source_url":18,"harvested_by":19,"retrieved_at":20},"WOAH Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, ch. 3.8.8 Peste des petits ruminants (infection with small ruminant morbillivirus)","WOAH ©: test names and purpose grades only (facts); no WOAH prose","https:\u002F\u002Fwww.woah.org\u002Ffileadmin\u002FHome\u002Feng\u002FHealth_standards\u002Ftahm\u002F3.08.08_PPR.pdf","load-reference-corpus.cjs","2026-09-16",{"claims":22,"source":23,"licence":24,"source_url":25,"harvested_by":26,"retrieved_at":27},"Arabic article (body)","WOAH Terrestrial Manual, Chapter 3.8.9 Peste des petits ruminants (infection with small ruminant morbillivirus)","facts cited; the Arabic article is original text","https:\u002F\u002Fwww.woah.org\u002Ffileadmin\u002FHome\u002Feng\u002FHealth_standards\u002Ftahm\u002F3.08.09_PPR.pdf","apply-chain-articles.cjs","2026-09-29",[29],{"id":30,"documentId":31,"slug":32,"title":33,"heading":34},254,"olls9l1hjltctw2zdwiz7e3w","infection-with-peste-des-petits-ruminants-virus","Infection with peste des petits ruminants virus","طاعون المجترات الصغيرة",[36,42],{"id":37,"documentId":38,"slug":39,"name_en":40,"name_ar":11,"heading":41},1515,"kb5w3rwizs3rqlt7he1sz639","goat","Goat","الماعز",{"id":43,"documentId":44,"slug":45,"name_en":46,"name_ar":11,"heading":47},1516,"t5n3sypt319doki27xt9jx73","sheep","Sheep","الأغنام",{"id":49,"documentId":50,"key":51,"slug":51,"name_en":52,"name_ar":53},29,"tfi4p3qd9ly8127q00z3ei4k","molecular-diagnostics","Molecular diagnostics (PCR and sequencing)","علم التشخيص الجزيئي",{"id":55,"documentId":56,"key":57,"slug":57,"name_en":58,"name_ar":59},501,"eta9h9soo6ij0hgpd31pr9we","rt-pcr","Reverse-transcription PCR (conventional)","تفاعل البوليمراز المتسلسل للنسخ العكسي",[],[],[]]